大鼠elisa檢測試劑盒的原理:
   

     利用Cre/LoxP 和來自酵母的FLP-frt 系統可以研究特定組織器官或特定細胞中靶基因滅活所導致

的表型[7]。通過常規基因打靶在基因組的靶位點上裝上兩個同向排列的1oxP，并以此兩側裝接上

loxP 的(“loxP floxed”)ES 細胞產生“loxPfloxed”小鼠,然后，通過將“loxP floxed”小鼠與Cre

轉基因鼠雜交(也可以其他方式向小鼠中引入Cre 重組酶)，產生靶基因發生特定方式(如特定的組織特

異性)修飾的條件性突變小鼠。在“loxP floxed”小鼠，雖然靶基因的兩側已各裝上了一個loxP，但

靶基因并沒有發生其他的變化，故“1oxP noxed”小鼠表型仍同野生型的一樣。但當它與Cre 轉基

因小鼠雜交時，產生的子代中將同時帶有“loxP floxed”靶基因和Cre 基因。Cre 基因表達產生的

Cre 重組酶就會介導靶基因兩側的1oxP 間發生切除反應，結果將一個loxP 和靶基因切除。這樣，靶

基因的修飾(切除)是以Cre 的表達為前提的。Cre 的表達特性決定了靶基因的修飾(切除)持性：即Cre

在哪一種組織細胞中表達，靶基因的修飾(切除)就發生在哪種組織細胞;而Cre 的表達水平將影響靶基

因在此種組織細胞中進行修飾的效率。所以只要控制Cre 的表達特異性和表達水平就可實現對小鼠中

靶基因修飾的特異性和程度。

    大鼠elisa檢測試劑盒方法;
   

誘導性基因敲除也是以Cre/loxp 系統為基礎，但卻是利用控制Cre 表達的啟動子的活性或所表達的

Cre 酶活性具有可誘導的特點，通過對誘導劑給予時間的控制或利用Cre 基因定位表達系統中載體的

宿主細胞特異性和將該表達系統轉移到動物體內的過程在時間上的可控性，從而在1oxP 動物的一定

發育階段和一定組織細胞中實現對特定基因進行遺傳修飾之目的的基因敲除技術。人們可以通過對誘

導劑給予時間的預先設計的方式來對動物基因突變的時空特異性進行人為控制、以避免出現死胎或動

物出生后不久即死亡的現象。常見的幾種誘導性類型如下：四環素誘導型;干擾素誘導型;激素誘導型;

腺病毒介導型。