原代培養的實驗原理及操作步驟！
原代培養的實驗原理及操作步驟！
原代培養是指由體內取出組織或細胞進行的培養，也叫初代培養。原代培養離體時間短，遺傳性狀和體內細胞相似，適于做細胞形態、功能和分化等研究。較為嚴格地說是指成功傳代之前的培養，此時的細胞保持原有細胞的基本性質，如果是正常細胞，仍然保留二倍體數。但實際上，通常把代至第十代以內的培養細胞統稱為原代細胞培養。的原代培養有組織塊培養和分散細胞培養。
一、基本介紹
細胞培養是生物學和醫學研究的手段之一，可分為原代培養和傳代培養兩種。
原代培養是直接從生物體獲取組織或器官的一部分進行培養，也稱初代培養。嚴格地說即從體內取出組織接種培養到次傳代階段，但實際上，通常把代至第十代以內的培養細胞統稱為原代細胞培養。一般持續1一4周。此期細胞呈活躍的移動，可見細胞分裂，但不旺盛。原代培養細胞與體內原組織在形態結構和功能活動上相似性大。由于培養的細胞剛剛從活體組織分離出來，故更接近于生物體內的生活狀態。這一方法可為研究生物體細胞的生長、代謝、繁殖提供有力的手段。同時也為以后傳代培養創造條件。
原代培養的過程指動物的組織或器官從機體取出后，經機械法或各種酶類（常用*）和鰲合劑（常用EDTA)處理，使之分散成單個細胞，加入適量培養基，置于合適的培養容器中，在無菌、適當溫度和一定條件下，使之生存、生長和繁殖的過程。
二、分類
的原代培養有組織塊培養和分散細胞培養。
⒈組織塊培養是將剪碎的組織塊直接移植在培養瓶壁上，加入培養基后進行培養。
⒉分散細胞培養則是將組織塊用機械法或化學法使細胞分散。如欲從胎兒或新生兒的組織分離到活性的游離細胞，經典的方法是用蛋白水解酶（如*和膠原酶）消化細胞間的結合物，或用金屬離子螯合劑（如EDTA）除去細胞互相粘著所依賴的Ca2+，再經機械輕度振蕩，使之成為單細胞。
三、實驗
⒈原理
將動物機體的各種組織從機體中取出，經各種酶（常用*）、螯合劑（常用EDTA）或機械方法處理，分散成單細胞，置合適的培養基中培養，使細胞得以生存、生長和繁殖，這一過程稱原代培養。
細胞培養是生物學和醫學研究的手段之一，可分為原代培養和傳代培養兩種。原代培養是直接從生物體獲取細胞進行培養。由于細胞剛剛從活體組織分離出來，故更接近于生物體內的生活狀態。這一方法可為研究生物體細胞的生長、代謝、繁殖提供有力的手段，同時也為以后傳代培養創造條件。利用此方法還可直接服務于臨床實踐。例如，用從手術中切除的腫瘤細胞進行原代培養，然后用該培養細胞進行抗癌藥物的篩選，根據腫瘤細胞對加入的*藥物的敏感性來幫助選擇效的*方案，有可能起到增強療效、降低副作用的作用。
⒉材料和用品
材料：胎鼠或新生鼠
儀器：培養瓶、*瓶、小玻璃漏斗、三角燒瓶、平皿、吸管、試管、移液管、無菌紗布、無菌*、廢液缸、血球計數板、蠟盤、科研、大頭針、離心管、75%酒精棉球。
藥品：培養基(RPMI1640或DMEM)、小牛血清、0.125%*、Hanks液、75%酒精、雙抗(*和*)、2%碘酒。
儀器：CO2培養箱、倒置顯微鏡、超凈臺、磁力攪拌器、離心機。
附：Hank’s液配方：
KH2PO4 0.06g，Nacl 8.0g，NaHCO3 0.35g，KCl 0.4g，葡萄糖1.0g，Na2HPO4·H2O 0.06g，加H2O至 1000ml
注：Hank’s液可以高壓滅菌。4℃下保存。
⒊實驗步驟
以胚胎小鼠為例
⑴取材：將孕鼠拉頸椎處死，投入75%酒精浸泡數秒消毒，提出孕鼠控掉酒精，放置于蠟盤中用大頭針固定。用科研逐層分離皮膚和肌肉組織，打開腹腔。注意不同的解剖層次使用不同的消毒器械。后取出雙角子宮置于無菌平皿內。
⑵用Hanks液洗滌3次，剪開子宮取出胚胎。除去子宮、血液和筋膜等組織。
⑶用彎頭剪把胚胎盡量剪碎，每個組織塊小于1mm3。在操作時應盡量將平皿蓋半蓋住平皿以防空氣中塵埃落下污染組織。再用Hanks液洗滌2~3次，自然沉淀。用吸管吸去上清液。以下可按兩種方法進行，即消化法和組織塊培養法。
⑷若使用消化法，則將組織塊放人三角燒瓶內加入10~30mL0.125%*，37℃磁力攪拌消化20多min。然后加人少量血清終止消化。用幾層無菌紗布過濾。取過濾液，800r/min離心5~10min收集細胞。棄上清，加入帶有雙抗的培養基，放入培養瓶中培養。
注：細胞分離的方法各實驗室不同，所采用的消化酶也不相同（如膠原酶，透明質酶等）。
⑸若進行組織塊培養，則不做步驟4，加入幾滴血清于組織塊中，再用彎頭吸管將組織塊懸液吸起。在一小培養瓶中逐個鋪展開，注意將瓶底涂抹均勻。將瓶子翻轉倒置后在37℃培養箱內放置2－3h。待組織塊微干與瓶壁粘牢后再輕輕將瓶子翻轉過來，從邊角加入4~5mL培養基，使細胞接觸到培養基，放培養箱內繼續進行培養。
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