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組織來源 | 外周血 | 貨號 | GOY-01X1305 |
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產品規格 | 5×105Cells/T25培養瓶 | 細胞形態 | 圓形 |
生長特性 | 懸浮 | 用途 | 僅供科研研究實驗 |
產品名稱 | 原代小鼠外周血淋巴細胞 | 英文名稱 | Mouse Peripheral Blood Lymphocyte Cells |
規格 | 5×10?Cells/T25培養瓶 | 貨號 | GOY-01X1305 |
組織來源 | 外周血 | 細胞形態 | 圓形 |
培養信息:
培養基 含FBS、生長添加劑、Penicillin、Streptomycin等
換液頻率 每2-3天換液一次
生長特性 懸浮
細胞形態 圓形
傳代特性 不增殖;不傳代
消化液 0.25%yi蛋白酶
培養條件 氣相:空氣,95%;CO2,5%
細胞簡介:
小鼠外周血淋巴分離自外周血;所謂的外周血,即除骨髓之外的血液,就是已經被造血器官釋放入循環系統參與循環的血,它區別于造血器官內的未成熟的血細胞或未被釋放入循環的血細胞。外周血淋巴細胞(Peripheral Blood Lymphocyte)簡稱PBL,主要是血液循環中的淋巴細胞,由T細胞和B細胞組成,其中T細胞(占70%~80%)和B細胞(占20%~30%)。
方法簡介:
公司實驗室分離的小鼠外周血淋巴采用取外周血、通過密度梯度離心法制備而來,細胞總量約為1×10?cells/瓶。
質量檢測:
公司實驗室分離的小鼠外周血淋巴經過檢測,且不含有HIV-1、HBV、HCV、支原體、細菌、酵母和真菌等。
1) 將5-10d的乳鼠浸泡入75%乙醇中,移入生物安全柜,
2) 從胸部解剖乳鼠,取出雙肺置于預冷的PBS中,盡可能的除去結締組織等,
3) 取肺邊緣部分,剪碎,將組織塊移入T25培養瓶中,倒置于細胞培養箱中,
4) 2h后,培養瓶中注入2 mL內皮培養基,小心將培養瓶正置于培養箱,確保組織塊不會飄起來,
5) 每3d換液2mL,待細胞從組織塊中爬出來后,隔2d換液,待細胞融合達到60-70%左右時,去除組織塊,將肺微血管內皮細胞重新鋪瓶。
小鼠神經干細胞 | 小鼠神經膠質細胞 |
小鼠腎動脈內皮細胞 | 寄生曲霉染料法熒光定量PCR試劑盒 |
小鼠腎動脈平滑肌細胞 | 赭曲霉染料法熒光定量PCR試劑盒 |
小鼠腎集合管上皮細胞 | 煙曲霉染料法熒光定量PCR試劑盒 |
小鼠腎間質成纖維細胞 | 構巢曲霉染料法熒光定量PCR試劑盒 |
小鼠腎近端小管上皮細胞 | 黃曲霉染料法熒光定量PCR試劑盒 |
小鼠腎上皮細胞 | 曲霉屬通用染料法熒光定量PCR試劑盒 |
人前列腺成纖維細胞 | 禽網狀內皮組織增殖病病毒染料法熒光定量RT-PCR試劑盒 |
小鼠腎上腺髓質細胞 | 隱孢子蟲通用染料法熒光定量PCR試劑盒 |
小鼠腎小管上皮細胞 | 貝氏隱孢子蟲染料法熒光定量PCR試劑盒 |
小鼠腎小球內皮細胞 | 小隱孢子蟲染料法熒光定量PCR試劑盒 |
小鼠腎小球系膜細胞 | 泰澤隱孢子蟲染料法熒光定量PCR試劑盒 |
小鼠腎周細胞 | 原代小鼠外周血淋巴細胞禽杯狀病毒染料法熒光定量RT-PCR試劑盒 |
小鼠腎足細胞 | 人類嗜T淋巴細胞病毒前病毒通用染料法熒光定量PCR試劑盒 |
流感病毒H10亞型(AIV-H10)檢測試劑盒(熒光PCR法) | 人類嗜T淋巴細胞病毒1型前病毒染料法熒光定量PCR試劑盒 |
1、您收到細胞后,請按照以下方法進行操作:
取出T-25cm2培養瓶,75%酒精擦拭培養瓶,拆下封口膜,放入37℃,5%CO2細胞培養箱中靜置4-6小時或過夜,以穩定細胞狀態,然后換用新鮮培養液繼續培養或進行傳代。
2、細胞傳代:
1)細胞生長至覆蓋培養瓶的80%面積時,棄25cm2培養瓶中的培養液,用PBS清洗細胞一次;
2)添加0.125%消化液約2ml至培養瓶中,倒置顯微鏡下觀察,待細胞回縮變圓后加入培養液終止消化,再輕輕吹打細胞使之脫落,然后將懸液轉移至15ml離心管中,1500rpm/min,離心5min;
3)棄上清,沉淀細胞用12ml培養基重懸,然后按1:2比例進行分瓶傳代,放入37℃,5%CO2細胞培養箱中培養;
4)待細胞貼壁后,觀察培養結果,之后進行換液培養或傳代。
3、細胞凍存:
1)細胞生長至覆蓋培養瓶的80%面積時,棄25cm2培養瓶中的培養液,用PBS清洗細胞一次;
2)添加0.125%消化液約2ml至培養瓶中,倒置顯微鏡下觀察,待細胞回縮變圓后輕輕吹打細胞使之脫落,再加入培養液終止消化,然后將懸液轉移至15ml離心管中,1500rpm/min,離心5min;
3)用適當量的凍存液(基礎培養基:FBS:DMSO=7:2:1)重懸細胞,并放置于凍存管中;
4)先將細胞凍存管放置于-20℃ 1.5h,然后將其移入-80℃過夜,24h后轉入液氮中進行長期保存。
4、細胞復蘇:
1)從液氮中取出細胞凍存管(注意:佩戴防爆管面具), 快速將其置入37℃水浴中解凍,直至凍存管中無結晶,然后用75%的酒精擦拭凍存管外壁;
2)將凍存管中的細胞移至15ml無菌離心管中,滴加入培養液5ml混勻細胞,然后將細胞懸液轉移至適當面積大小的培養皿中;
3)放置于37℃,5%CO2細胞培養箱中培養;
4)第二天,換用新鮮培養基繼續培養。
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