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檢測細胞衰老具體流程

時間:2023/5/15閱讀:362
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   細胞衰老是細胞在正常環境條件下發生的功能減退、逐漸趨向死亡的現象。衰老的細胞表現為細胞體積變大,呈扁平狀;細胞核變大,核膜內陷,染色質聚集、固縮、裂解;胞質內顆粒增加,有空泡形成;線粒體的數目及形狀發生改變;膜流動性降低;溶酶體內容物增多,導致溶酶體酶β-半乳糖苷酶活性升高。衰老細胞所具有的上述特征成為各種細胞衰老檢測手段的依據。

檢測細胞衰老具體流程:

1、細胞接種前在6孔培養板中預先放置滅菌的細胞片,每孔加入1×10E5個細胞,37℃ 5% CO2條件下培養過夜,使細胞在細胞片上生長。

2、在超凈工作臺中吸棄6孔培養板中的培養液,加入×1 PBS,洗滌細胞1次,隨后加入2%甲醛/0.2%戊二醛固定液,室溫條件下固定3~5分鐘。

3、吸棄2%甲醛/0.2%戊二醛固定液,加入×1 PBS,洗滌細胞3次,每次3分鐘。

4、吸棄×1 PBS,加X-Gal溶液以浸沒細胞片為宜,37℃孵育4~8小時或過夜,用保鮮膜包被6孔培養板以防染液蒸發。

5、取出細胞爬片,去離子水沖洗2次,再次用固定液固定4分鐘,流水輕輕沖洗。

6、將細胞爬片按此順序脫水、透明∶95%酒精I(2分鐘)→95%酒精Ⅱ(2分鐘)→100%酒精I(2分鐘)→100%酒精I(5分鐘)→二甲苯I(2分鐘)→二甲苯Ⅱ(2分鐘)。

7、中性樹膠封片。

8、在普通光學顯微鏡下觀察衰老細胞形態。

每張片子鏡下計數400個細胞,確定X-Gal染色陽性細胞(衰老細胞)在細胞群體中的所占的百分比即衰老細胞率(藍染細胞數/總計細胞數×100%)。


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